南京师范大学地理科学学院近期在《Applied Soil Ecology》上发表了在还原性土壤除害过程中瘤胃球菌科,毛螺菌科和梭菌科是优势菌群的文章。在这项研究中天昊生物有幸承担了样品的扩增子测序工作。在恭喜客户又发表文章同时,我们想跟大家分享一下文章的研究思路。
英文题目:The families Ruminococcaceae, Lachnospiraceae, and Clostridiaceae are the dominant bacterial groups during reductive soil disinfestation with incorporated plant residues
中文题目:在还原性土壤除害过程中瘤胃球菌科,毛螺菌科和梭菌科是优势菌群
期刊名:Applied Soil Ecology
影响因子:2.916
研究概要:
还原性土壤除害(RSD),又称生物性土壤除害或厌氧性土壤除害,是一种控制土壤传播疾病的环境友好型方法。微生物被认为是RSD的关键因素,这对于理解RSD的机制是至关重要的,然而关于这些重要微生物的信息有限。本研究在盆栽试验中对4种土壤进行了RSD处理,利用16S rDNA扩增子测序检测了RSD过程中存在的细菌群落。结果表明,RSD显著改变了土壤细菌群落结构,降低了细菌的丰富度和多样性。厚壁菌门相对丰度显著增加,放线菌门和酸杆菌门相对丰度降低。属于厚壁菌门的瘤胃球菌科,毛螺菌科和梭菌科是土壤RSD过程中的三大优势菌科。瘤胃球菌科和毛螺菌科,而不是梭菌科与RSD期间的pH下降密切相关,这被认为是短链脂肪酸积累的一个指标。除这些细菌群外,在RSD处理过的土壤中,芽孢杆菌目、细菌科、伯克氏菌目和拟杆菌目也很丰富。综上所述,RSD处理、土壤类型及其相互作用共同影响了RSD处理土壤中的细菌群落组成。
研究背景:
由特定病原体引起的土传植物疾病已成为一个全球性的问题,严重威胁农业可持续发展。以前,农民使用化学杀虫剂,来杀死土壤传播的致病微生物。然而,由于人们越来越担心食品安全和环境污染,这些化学农药的使用正逐渐受到限制。因此,许多研究人员正在寻找管理土传病原体的替代方法。2000年,日本和荷兰分别开发了还原性土壤除害(RSD),也称为生物土壤除害或厌氧土壤除害,作为化学土壤除害的潜在替代品。RSD的概念是提供不稳定的有机基质,在被塑料薄膜覆盖的潮湿土壤中刺激微生物驱动的厌氧土壤条件。该方法已被证明对多种土壤传播的病原菌有效,如镰刀菌、青枯菌、大丽轮枝菌、腐霉、黄连白绢病菌和疫霉,以及非同源性线虫和短体线虫。然而,RSD的确切机制尚不清楚。普遍认为,土壤微生物群落在RSD过程中发生了显著变化,优势微生物在RSD机制中起着重要作用。这些微生物要么由一些拮抗剂组成,要么产生拮抗化合物,如乙酸、丁酸、Fe2+和Mn2+,从而从土壤中清除病原体。由于大多数真菌生长在有氧条件下,在RSD过程中的功能微生物通常是细菌,其中许多是厌氧菌或兼性厌氧菌。然而,只有少数研究对RSD过程中的优势菌进行了研究。在这些研究中,使用基于16S rRNA基因序列的变性梯度凝胶电泳和克隆文库分析显示,梭菌属、氧杆菌属和芽孢杆菌属是RSD处理土壤中最优势的细菌。然而,由于土壤的多样性和复杂性以及添加的有机质,在不同的土壤中利用不同的有机质进行RSD可能会导致不同细菌群的优势。我们仍然不确定是否有其它优势细菌可能出现在不同的RSD处理土壤。本研究以4种致病性农业土壤为研究对象,采用MiSeq测序方法,对未处理和RSD处理土壤中的细菌群落进行了比较,并对RSD处理过程中的优势菌群进行了研究。
研究对象:
土壤和有机基质
本研究中使用的四种土壤(JF、BG、HX和NT)如表1所示。由于连续单季种植,这些土壤严重感染土壤传播的病原体(表1)。土壤从4个农业地点采集,深度在3-20厘米之间,每种土壤样品被彻底混合,用于孵化试验。玉米秸秆和苜蓿晒干,切碎,作为有机基质进行RSD处理。玉米秸秆和苜蓿中的总有机碳和氮分别为428.7 g kg-1和7.49 g kg-1和399.1 g kg-1和13.5 g kg-1。
实验设计
对每种土壤进行对照(CK)和RSD两种处理。表1描述了四种土壤的RSD处理,加入玉米秸秆和苜蓿等有机基质(1%,w/w)后,将土壤(100克装在圆柱形容器中;直径5厘米;高度8厘米)灌至饱和,并用两层塑料膜(聚乙烯,透明,厚度0.1mm,透氧性低)密封,然后将土壤在30°C下培养15天。CK处理的土壤没有用有机基质(玉米秸秆和苜蓿)进行改良,也没有密封,在培养过程中其含水量保持在14-18%。每种处理分三次进行。培养结束时,经RSD处理的土壤的氧化还原电位(eh)在−23.7 mV到−87.5 mV之间,表明达到了降低的条件。然后,立即采集土壤样本,并进行DNA提取。
表1本研究中使用的四种土壤和处理方法的说明
MiSeq测序:细菌测序区段(V4);
研究结果:
细菌群落的丰富性和多样性
双向方差分析表明,RSD处理、土壤类型及其相互作用对细菌多样性有显著影响。NT土壤中细菌ACE和香农指数明显高于其他土壤。单因素方差分析表明,与对照土壤相比,RSD处理后的JF和BG土壤细菌ACE指数显著降低。相比之下,RSD处理的HX和NT土壤中的细菌ACE指数没有显著差异。RSD处理的JF和NT土的香农指数显著低于相应的CK土壤。与相应的CK土壤相比,RSD处理的BG和HX土壤的香农指数略有下降,但不显著(图1)。
图1土壤细菌群落指数ACE和Shannon
与对照组相比,RSD处理土壤中的特异OTU更少。在RSD处理的JF、BG、HX和NT土壤中,特异OTU分别占总OTU的80.2%、48.2%、46.6%和66.6%(图2)。
图2 对照(CK)土壤和还原性土壤除害(RSD)处理土壤中共享和特异的OTUs。
细菌群落的PCA
采用主成分分析法(PCA)对RSD处理和对照土壤样品中细菌群落的异同进行了评价。RSD处理和未处理的CK土壤样品之间存在着主要的差异,而不是不同土壤类型之间的差异。PERMANOVA进一步证实,RSD处理、土壤类型及其相互作用对细菌群落有显著影响(P<0.001),三个因子中的r2分别为0.47、0.30和0.15。此外,在RSD处理过的土壤样本中,厚壁菌门Firmicutes是最重要的分布决定因素,其次是Actinobacteria, Chloroflexi, Acidobacteria, Planctomycetes, Gemmatimonadetes(图3)。
图3 还原性土壤除害(RSD)处理(红色)和对照(CK)(黑色)土壤样品细菌群落的主成分分析
土壤中的优势菌群
在多个分类水平上,细菌组成显著受RSD处理、土壤类型及其相互作用的影响。在门水平上,RSD处理后的JF、BG、HX和NT土壤中厚壁菌门的相对丰度比相应CK土壤高3.92、11.32、3.00和25.57倍。在不同土壤中,JF土壤中厚壁菌门的相对丰度最高。另外,与相应对照土壤相比,RSD处理土壤中放线菌门和酸杆菌门的相对丰度也显著降低(图4)。
图4 对照(CK)和还原性土壤除害(RSD)处理土壤中细菌门的相对丰度
在目水平上,梭菌目属于厚壁菌门,是主要的细菌目,在RSD处理的JF、BG、HX和NT土壤中,其相对丰度显著增加了62.9%、28.4%、10.6%和35.1%。在不同土壤中,JF土壤中梭菌目相对丰度最高。相比之下,在RSD处理的JF和HX土壤中相对丰度降低的主要细菌目是放线菌目,在RSD处理的BG和NT土壤中相对丰度降低的主要细菌目是酸杆菌目和噬纤维菌目(图5)。
图5 与对照土壤相比,还原性土壤除害(RSD)处理的JF、BG、HX和NT土壤中细菌数量相对增加和减少
在科水平上,经RSD处理的JF、BG和HX土壤中的瘤胃球菌科和梭状芽孢杆菌科显著增加,在RSD处理的JF和HX土壤中,毛螺菌科显著增加。除了RSD处理土壤中富集的常见菌科外,每种土壤类型中也富集了一些特异的细菌科,如JF中的鞘氨醇杆菌科和肠杆菌科;BG中的杆菌科和拟杆菌科中的非分类细菌;HX中的黄单胞菌科和类芽孢杆菌科;NT中的消化链球菌科、Ignavibacteria科和Rhodocyclaceae(图6)。
图6 与对照土壤相比,还原性土壤除害(RSD)处理的JF、BG、HX和NT土壤中细菌科的相对丰度增加和减少
土壤pH,除害效率和优势菌群的关系
RSD处理后,四种土壤的土壤pH值变化显著不同。Pearson’s相关分析表明,土壤pH变化(由RSD处理引起)与RSD处理土壤中厚壁菌门的相对丰度呈显著负相关,土壤初始pH(与土壤类型相关)与土壤中酸杆菌和放线菌的相对丰度呈负相关。梭菌目(RSD处理土壤中的主要细菌目,属于厚壁菌门)的相对丰度与土壤pH变化呈负相关,与土壤初始pH呈正相关。与此相反,放线菌目(放线菌门的主要目)的相对丰度与土壤pH变化呈正相关,与土壤初始pH呈负相关。作为梭菌目的两个主要科,瘤胃球菌科和毛螺菌科的相对丰度与土壤初始pH呈正相关,与土壤pH变化呈负相关,而梭菌目的另一个主要科,梭菌科的相对丰度与土壤初始pH以及土壤pH变化不相关。同样地,土壤pH与梭菌属、粪球菌属和UC瘤胃球菌科的相关性与梭菌目、毛螺菌科和瘤胃球菌科的相关性相似。病原菌丰度与厚壁菌门及其科,如梭菌科、瘤胃球菌科、毛螺菌科呈显著负相关,与酸杆菌门、放线菌门、 绿弯菌门、芽单胞菌门和浮霉菌门呈显著正相关(表2)。
表2土壤pH、病原菌丰度与优势菌群相对丰度的Pearson’s相关系数